1、 生化材料
鸡胰腺粉(冻干)
椰子油
腰果酚A
腰果酚B
生物质腰果酚磺酸盐表面活性剂
2、 特种树脂
红外增感树脂
耐溶剂型成膜树脂
热敏相转变树脂
KFP系列树脂
3、 响应型单体
2,4,6-三己氧基重氮苯5-苯甲酰基-4-羟基-2-甲氧基苯磺酸盐
红外增感染料
N-异丙基丙烯酰胺
4-磺酰苯基丙烯酰胺
N,N'-(1,4-亚苯基)双马来酰亚胺(对苯基双马来酰亚胺)
N-对羟苯基丙烯酰胺(AHPAA)
2-氯-1-甲酰-3-羟基亚甲基环己烯
1,1,2-三甲基苯并[e]吲哚
4、手性化合物
5、QINP1系列潜伏性环氧树脂固化剂
6、石材防水背胶(背网专用)
 
 
 
 

当归挥发油对人脐静脉内皮细胞增殖、凋亡及Ⅲ型胶原合成的影响

刘凯 张选奋 张瑾 曹明华 钟琳 樊勇
  创面愈合和瘢痕形成是新血管形成的结果,内皮细胞增殖和合成细胞外基质是血管形成的基础[1]。当归提取物通过促进胃上皮细胞移动和增殖而促进溃疡愈合[2,3],通过清除自由基和升高PGI2和cAMP抑制主动脉平滑肌细胞增殖抑制血管生成[4],减少前胶原Ⅲ的合成起抗CCl4引起的实验性肝纤维化[5,6],已被用于增生性瘢痕的试验性治疗[7]。然而,当归挥发油(angelicanaphtha,AN)对人脐静脉内皮细胞(humanumbilicalveinendothelialcell,HUVEC)增殖、凋亡和胶原合成的影响鲜见报道,我们进行了如下检测。
1 材料和方法
1.1 材料
1. 1. 1 主要试剂 DMEM细胞培养基(Gibco公司)、胎牛血清(Hyclone公司)、兔抗人Ⅷ因子相关抗原多克隆抗体(SantaCruz)、Ⅲ型前胶原氨端肽(procollagenⅢN terminalpeptide,PⅢNP)放射免疫分析试剂盒(北方生物技术研究所)。
1 .1 .2 主要仪器 倒置相差显微镜(德国,Leica)、CO2恒温孵育箱(美国,REVCO)、流式细胞仪(美国BD公司,FACScan),酶标仪(奥地利,Sunrise)。
1 .2 方法
1 .2 .1 细胞培养及鉴定 细胞培养参照文献[8]方法。用胶原酶灌流消化法分离新鲜脐带的HUVEC,在含20%胎牛血清(FBS)、青霉素105U L、链霉素100mg L的DMEM、37℃5%CO2饱和湿度培养。细胞融合后,胰酶消化传代,实验用3~5代细胞。Ⅷ因子相关抗原免疫细胞化学染色阳性[9]和倒置显微镜下呈鹅卵石状排列等鉴定为内皮细胞。
1. 2. 2 药物制备及实验分组 采用水蒸气蒸馏法提取当归挥发油。当归药材3000g,粉碎,过3号筛。连续蒸馏8h,收集到浓度为1. 2g ml的挥发油(11 .958g 9. 98ml)。铝箔密封4℃保存。1mlAN用2ml1%吐温 80助溶,初始浓度为400mg ml。用DMEM配成AN终浓度为1、4、16mg L的溶液。实验分为AN组和对照组,AN组分别采用上述3种浓度的AN,对照组用含相应浓度吐温 80的DMEM培养液。
1. 2. 3 细胞增殖检测 用噻唑蓝染色法检测。内皮细胞(1×105 ml)于96孔板常规培养24h后,AN刺激48h,每孔加5mg ml噻唑蓝20μl孵育4h,弃去上清液,加入DMSO150μl,振荡10min。酶标仪上490nm下测吸光度A值,每组8孔(n=8),重复测量2次。促增殖率=(当归组A值-对照组A值) (对照组A值-培养液组A值)×100%。
1 .2 .4 细胞周期及凋亡检测 用碘化丙啶(PI)染色后流式细胞检测。内皮细胞常规培养24h后,加入AN培养48h。常规消化离心细胞,PBS洗3次,预冷的70%乙醇4℃固定过夜,RNA酶37℃消化30min,PI染色。流式细胞仪检测细胞DNA,每个样品至少测定10000个细胞,重复2次。
1 .2. 5 胶原合成测定 放射免疫法检测培养上清液中PⅢNP。细胞常规培养24h,加入AN培养12、24、48h后吸取上清液,-20℃保存,2周内检测。检测时,培养上清液100μl中加入兔PⅢNP抗体200μl,4℃放置20h,加125I PⅢNP100μl,充分摇匀,4℃放置4h,加驴抗兔免疫分离剂500μl,室温放置20min,4000r min离心30min,吸弃上清液,γ计数器测定放射活性。重复测定2次,取平均值。1 2 6 统计学处理 数据用均数±标准差表示,SPSS10 0软件包中单因素方差处理。P<0 05为差异有统计学意义。
2 结果
2 .1 不同浓度的AN对HUVEC增殖的影响
   AN在1、4mg L时促进HUVEC增殖,4mg L时达最大效果(P<0 01),16mg L时降低。AN在16mg L的促增殖作用明显低于4mg L(P<0 05,表1)。


2. 2 不同浓度的AN对HUVEC周期和凋亡的影响
    ≤4mg L的AN减少G0 G1期细胞,显著增加S期细胞(P<0 05),凋亡率降低。16mg L的AN明显增加G0 G1期细胞,减少S期细胞(P<0 05),凋亡率增高(P<0 05,表2)。


2 .3 不同浓度的AN对HUVEC胶原合成影响
    随AN浓度增加和作用时间延长,AN降低HUVEC培养上清液的PⅢNP的浓度(P<0 05或0 01,表3)。
3 讨论
    当归活性成分包括主要起抑制效应的挥发油和兴奋作用的水溶性两部分[10,11]。我们发现,AN对HUVEC增殖具有双向调节作用:≤4mg L时促进细胞增殖,减少G0 G1期细胞而显著增加S期细胞,并降低凋亡率;≥16mg L时抑制增殖,显著增加G0 G1期细胞而减少S期细胞,并增加凋亡率。这种双向性调节作用的机制尚需进一步研究。


    以往的研究发现,当归注射液可抑制成纤维细胞合成胶原[12],拮抗大鼠气管内注入博莱霉素诱导的肺纤维化[13],并显著降低四氯化碳诱导的大鼠肝纤维化模型的血清Ⅲ型前胶原水平[6]。我们发现AN呈剂量和时间依赖性地抑制HUVEC合成胶原,均支持AN可用于防治瘢痕增生。然而,AN的抑制作用的机制尚不清楚,可能与其化学成分有关,AN的主要成分为藁本内酯和丁烯基酞内酯均有抑制胶原合成的作用[14]。Ⅲ型前胶原氨端肽(PⅢNP)是Ⅲ型前胶原在细胞外沉积前经氨基端肽酶裂解所产生的氨基端多肽,分子较小可进入血液循环,可通过检测血液中PⅢNP的含量来判断体内胶原合成情况,已作为判定肝纤维化程度的指标[15]。创伤愈合和瘢痕增生过程中存在较高的胶原的合成和分解,因此,PⅢNP水平可用作检测Ⅲ型胶原合成情况。抑制内皮细胞增殖和合成胶原可抑制血管生成而抑制血管形成,可有效抑制瘢痕形成。但是,抑制血管生成可延缓创伤愈合并导致瘢痕增生。临床急需既能促进创伤愈合又能抑制瘢痕过度增生的药物。≤4mg LAN促进HUVEC增殖可增加血管形成,促进创面愈合,而≥16mg L时诱导HUVEC细胞凋亡,能减少血管形成,且AN可抑制HUVEC胶原合成,因此,AN具有这种双向调节效应,可促进创面愈合并防止瘢痕过度增生。

 
 
 
   
 
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